Effect of Plant Growth Regulators on Morphological Change of In Vitro Shoot Culture of Mesona chinensis Bentham
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
Effect of types and volume of disinfectant on sterilizing shoot tip explant of Mesona chinensis Bentham were studied. The results found that the highest survival percentage of explants could be observed when 15% Clorox® was sterilized for 10 minutes. Shoot tip explants were then transferred to culture on semi-solid Murashige and Skoog medium (1962) supplemented with different plant growth regulators (BA, Kinetin, TDZ, IBA, IAA and NAA) at different concentrations (0, 0.5, 1.0, 2.0 and 4.0 milligram/liter) for 12 weeks. The results showed that the highest number of regenerated shoots (12.5 shoots) could obtain on MS medium augmented with 0.5 milligram/liter of BA while the highest root number (20.4 roots) could be observed on the MS medium augmented with 2.0 milligram/liter NAA.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
Articles in this journal are copyrighted by the x may be read and used for academic purposes, such as teaching, research, or citation, with proper credit given to the author and the journal.use or modification of the articles is prohibited without permission.
statements expressed in the articles are solely the opinions of the authors.
authors are fully responsible for the content and accuracy of their articles.
other reuse or republication requires permission from the journal."
References
กาญจนรี พงษ์ฉวี และคนอื่นๆ. (2554). การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพรรณไม้น้ำ Cryptocoryne affinis Hook. กรุงเทพฯ : กรมประมง สำนักวิจัยและพัฒนาประมงน้ำจืด.
ธนากร วงษศา และคนอื่นๆ. (2555). ผลขององค์ประกอบอาหารต่อการเจริญและพัฒนาของต้นอ่อนกล้วยไม้พญาฉันทันต์ (Vandopsis gigantea (Lindl.) Pfitz.) ในสภาพปลอดเชื้อ. สักทอง : วารสารมนุษยศาสตร์และสังคมศาสตร์, 18(2), 11-21.
นัยนา เสนาศรี และเอกรัตน์ วสุเพ็ญ. (2553). การฟอกฆ่าเชื้อที่เหมาะสมสำหรับการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อแอมมาเนียแดง (Ammannia senegalensis). สกลนคร : มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลอีสาน วิทยาเขตสกลนคร.
ปิยะดา ตันตสวัสดิ์ และอารีย์ วรัญญูวัมก์. (2551). บทปฏิบัติการการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช. กรุงเทพฯ : เอเจนเทค.
วรรณดา พิพัฒน์เจริญชัย, กาญจนรี พงษ์ฉวี และรัฐภัทร์ ประดิษฐ์สรรพ์. (2555). การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่ออเมซอน Echinodorus horemanii Rataj. กรุงเทพฯ : กรมประมง สำนักวิจัยและพัฒนาประมงน้ำจืด.
เยาวพา จิระเกียรติกุล และขวัญจิตต์ บุญหา (2552). การเพิ่มจำนวนต้นและชักนำให้เกิดรากในสภาพปลอดเชื้อของต้นสร้อยสายเพชร (Clerodendrum wallichii). วารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 17(3), 61-67.
อนุพันธ์ กงบังเกิด และพันธิตรา กมล. (2549). ผลของไซโตไคนินและออกซินต่อการพัฒนาของเนื้อเยื่อเพาะเลี้ยงกระเจียวขาว. NU Science Journal, 2(2), 183-201.
อรอุมา สองศรี และคนอื่นๆ. (2555). การฟอกกำจัดเชื้อชิ้นส่วนข้อของ Dioscorea birmanica เพื่อการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. วารสารวิทยาศาสตร์เกษตร, 2(ฉบับพิเศษ), 637-640.
Arikat, N.A., et al. (2004). Micropropagation and accumulation of essential oils in wild sage (Salvia fruticosa Mill.). Scientia Horticulturae, 100(1-4), 193-202.
Arulselvi P.I. & Krishnaveni, S. (2009). Effect of hormones, explants and genotypes in in vitro culturing of sorghum. Journal of Biochemical Technology, 1(4), 96-103.
Chishti, N., et al. (2006). Clonal propagation of Mentha arvensis L. through nodal explant. Pakistan Journal of Biological Sciences, 9, 1416-1419.
Gaspar, T., et al. (1996). Plant hormones and plant growth regulators in plant tissue culture. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 32(4), 272-289.
Ghanti, K.S., et al. (2004). High frequency shoot regeneration from Phyllanthus amarus Schum. & Thonn. Indian Journal of Biotechnology, 3, 103-107.
Gonçalves, S. & Romano, A. (2013). In vitro culture of lavenders (Lavandula spp.) and the production of secondary metabolites. Biotechnology Advances, 31(2), 166-174.
Huetteman, C.A. & Preece, J.E. (1993). Thidiazuron: a potent cytokinin for woody plant tissue culture. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 33, 105-119.
Karthikeyan, K., Chandran, C. & Kulothungan, S. (2009). Rapid clonal multiplication through in vitro axillary shoot proliferation of Centeella asiatica L. Indian Journal of Biotechnology, 8, 232-235.
Lang, G. (2012). Studies on rapid propagation and polyploid induction of Mesona chinensis. Master's thesis, Guangxi Normal University.
Mehta, J., et al. (2012). An efficient protocol for clonal micropropagation of Mentha piperita L. (Pipperment). Asian Journal of Plant Science and Research, 2(4), 518-523.
Monfort, L.E.F., et al. (2018). Effects of plant growth regulators, different culture media and strength MS on production of volatile fraction composition in shoot cultures of Ocimum basilicum. Industrial Crops and Products, 116, 231-239.
Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15, 473-497.
Nahida C., et al. (2006). Clonal propagation of Menthe arvensis L. Through explant. Biological Sciences, 1416-1419.
Nayak, N.R., Patnaik, S. & Rath, S.P. (1997). In vitro propagation of three epiphytic orchids, Cymbidium aloifolium (L.) Sw., Dendrobium aphyllum (Roxb.) Fisch and Dendrobium moschatum (Buch-Ham) Sw. through thidiazuron-induced high frequency shoot proliferation. Scientia Horticulturae, 71(3-4), 243-250.
Rao, S., et al. (2012). Efficient plant regeneration from leaf explants of Bacopa monniera (L.) Wettst. : A threatened medicinal herb. Annals of Phytomedicine, 1(1), 110-117.
Sarwar, S., et al. (2009). In vitro direct regeneration in mint from different explants on half strength MS medium. African Journal of Biotechnology, 8(18), 4667-4671.
Zuzarte, M.R., et al. (2010). Trichomes, essential oils and in vitro propagation of Lavandula pedunculata (Lamiaceae). Industrial Crops and Products, 32(3), 580-587.
