ผลของสารควบคุมการเจริญเติบโตของพืชต่อการเปลี่ยนแปลงทางสัณฐานของปลายยอดต้นเฉาก๊วยในสภาพปลอดเชื้อ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษาผลของชนิดและปริมาณสารฟอกฆ่าเชื้อที่เหมาะสมในการฟอกฆ่าเชื้อชิ้นส่วนปลายยอดเฉาก๊วย ผลการทดลองพบว่า เปอร์เซ็นต์การรอดชีวิตสูงที่สุดเมื่อฟอกฆ่าเชื้อชิ้นส่วนด้วย 15% Clorox® เป็นเวลา 10 นาที และเมื่อย้ายชิ้นส่วนปลายยอดไปเพาะเลี้ยงบนอาหารกึ่งแข็งสูตร Murashige and Skoog (1962) ที่เติมสารควบคุมการเจริญเติบโตของพืชชนิด (BA, Kinetin, TDZ, IAA, IBA และ NAA) ที่ความเข้มข้น 0, 0.5, 1.0, 2.0 และ 4.0 มิลลิกรัมต่อลิตร เพาะเลี้ยงเป็นเวลา 12 สัปดาห์ ผลการทดลองแสดงให้เห็นว่า มีจำนวนสูงสุดของยอดที่เจริญขึ้นมาใหม่ (12.5 ยอด) เมื่อเพาะเลี้ยงชิ้นส่วนปลายยอดบนอาหาร MS ที่เติม BA 0.5 มิลลิกรัมต่อลิตร ในขณะที่จำนวนสูงสุดของรากที่เจริญขึ้นมาใหม่ (20.4 ราก) เมื่อเพาะเลี้ยงชิ้นส่วนปลายยอดบนอาหาร MS ที่เติม NAA 2.0 มิลลิกรัมต่อลิตร
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
##default.contextSettings.thaijo.licenseTerms##เอกสารอ้างอิง
กาญจนรี พงษ์ฉวี และคนอื่นๆ. (2554). การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพรรณไม้น้ำ Cryptocoryne affinis Hook. กรุงเทพฯ : กรมประมง สำนักวิจัยและพัฒนาประมงน้ำจืด.
ธนากร วงษศา และคนอื่นๆ. (2555). ผลขององค์ประกอบอาหารต่อการเจริญและพัฒนาของต้นอ่อนกล้วยไม้พญาฉันทันต์ (Vandopsis gigantea (Lindl.) Pfitz.) ในสภาพปลอดเชื้อ. สักทอง : วารสารมนุษยศาสตร์และสังคมศาสตร์, 18(2), 11-21.
นัยนา เสนาศรี และเอกรัตน์ วสุเพ็ญ. (2553). การฟอกฆ่าเชื้อที่เหมาะสมสำหรับการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อแอมมาเนียแดง (Ammannia senegalensis). สกลนคร : มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลอีสาน วิทยาเขตสกลนคร.
ปิยะดา ตันตสวัสดิ์ และอารีย์ วรัญญูวัมก์. (2551). บทปฏิบัติการการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช. กรุงเทพฯ : เอเจนเทค.
วรรณดา พิพัฒน์เจริญชัย, กาญจนรี พงษ์ฉวี และรัฐภัทร์ ประดิษฐ์สรรพ์. (2555). การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่ออเมซอน Echinodorus horemanii Rataj. กรุงเทพฯ : กรมประมง สำนักวิจัยและพัฒนาประมงน้ำจืด.
เยาวพา จิระเกียรติกุล และขวัญจิตต์ บุญหา (2552). การเพิ่มจำนวนต้นและชักนำให้เกิดรากในสภาพปลอดเชื้อของต้นสร้อยสายเพชร (Clerodendrum wallichii). วารสารวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 17(3), 61-67.
อนุพันธ์ กงบังเกิด และพันธิตรา กมล. (2549). ผลของไซโตไคนินและออกซินต่อการพัฒนาของเนื้อเยื่อเพาะเลี้ยงกระเจียวขาว. NU Science Journal, 2(2), 183-201.
อรอุมา สองศรี และคนอื่นๆ. (2555). การฟอกกำจัดเชื้อชิ้นส่วนข้อของ Dioscorea birmanica เพื่อการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. วารสารวิทยาศาสตร์เกษตร, 2(ฉบับพิเศษ), 637-640.
Arikat, N.A., et al. (2004). Micropropagation and accumulation of essential oils in wild sage (Salvia fruticosa Mill.). Scientia Horticulturae, 100(1-4), 193-202.
Arulselvi P.I. & Krishnaveni, S. (2009). Effect of hormones, explants and genotypes in in vitro culturing of sorghum. Journal of Biochemical Technology, 1(4), 96-103.
Chishti, N., et al. (2006). Clonal propagation of Mentha arvensis L. through nodal explant. Pakistan Journal of Biological Sciences, 9, 1416-1419.
Gaspar, T., et al. (1996). Plant hormones and plant growth regulators in plant tissue culture. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 32(4), 272-289.
Ghanti, K.S., et al. (2004). High frequency shoot regeneration from Phyllanthus amarus Schum. & Thonn. Indian Journal of Biotechnology, 3, 103-107.
Gonçalves, S. & Romano, A. (2013). In vitro culture of lavenders (Lavandula spp.) and the production of secondary metabolites. Biotechnology Advances, 31(2), 166-174.
Huetteman, C.A. & Preece, J.E. (1993). Thidiazuron: a potent cytokinin for woody plant tissue culture. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 33, 105-119.
Karthikeyan, K., Chandran, C. & Kulothungan, S. (2009). Rapid clonal multiplication through in vitro axillary shoot proliferation of Centeella asiatica L. Indian Journal of Biotechnology, 8, 232-235.
Lang, G. (2012). Studies on rapid propagation and polyploid induction of Mesona chinensis. Master's thesis, Guangxi Normal University.
Mehta, J., et al. (2012). An efficient protocol for clonal micropropagation of Mentha piperita L. (Pipperment). Asian Journal of Plant Science and Research, 2(4), 518-523.
Monfort, L.E.F., et al. (2018). Effects of plant growth regulators, different culture media and strength MS on production of volatile fraction composition in shoot cultures of Ocimum basilicum. Industrial Crops and Products, 116, 231-239.
Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15, 473-497.
Nahida C., et al. (2006). Clonal propagation of Menthe arvensis L. Through explant. Biological Sciences, 1416-1419.
Nayak, N.R., Patnaik, S. & Rath, S.P. (1997). In vitro propagation of three epiphytic orchids, Cymbidium aloifolium (L.) Sw., Dendrobium aphyllum (Roxb.) Fisch and Dendrobium moschatum (Buch-Ham) Sw. through thidiazuron-induced high frequency shoot proliferation. Scientia Horticulturae, 71(3-4), 243-250.
Rao, S., et al. (2012). Efficient plant regeneration from leaf explants of Bacopa monniera (L.) Wettst. : A threatened medicinal herb. Annals of Phytomedicine, 1(1), 110-117.
Sarwar, S., et al. (2009). In vitro direct regeneration in mint from different explants on half strength MS medium. African Journal of Biotechnology, 8(18), 4667-4671.
Zuzarte, M.R., et al. (2010). Trichomes, essential oils and in vitro propagation of Lavandula pedunculata (Lamiaceae). Industrial Crops and Products, 32(3), 580-587.
