ผลของสารสกัดหยาบจากว่านน้ำต่อการตาย ยับยั้งการวางไข่และพัฒนาเจริญเติบโตของหนอนใยผัก, Plutella xylostella (L.) (Lepidoptera : Yponomeutidae)
Main Article Content
บทคัดย่อ
วัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของสารสกัดหยาบจากว่านน้ำในการเป็นสารฆ่า ยับยั้งการวางไข่และยับยั้งการเจริญเติบโตของหนอนใยผักวัย 4 ที่ระดับความเข้มข้น 0.125, 0.25, 0.5, 1.0 และ 2.0% (w/v) การศึกษาการฆ่าและการยับยั้งการพัฒนาการเจริญเติบโต ใช้หนอนใยผัก 10 ตัวต่อความเข้มข้น ทำการทดลอง 5 ซ้ำ การยับยั้งการวางไข่ใช้ผีเสื้อหนอนใยผัก 20 คู่ต่อกรง ทำการทดลอง 3 ซ้ำ วางแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ (CRD) ทำการทดลองที่ห้องปฏิบัติการชีววิทยาอุณหภูมิห้อง 25-27 องศาเซลเซียส ความชื้นสัมพัทธ์ 75-80 เปอร์เซ็นต์ ผลการทดลองพบว่าสารสกัดจากว่านน้ำมีประสิทธิภาพในการเป็นสารฆ่า การยับยั้งการวางไข่และเจริญเติบโตของหนอนใยผักมีความแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญที่ความเชื่อมั่น 95% เมื่อเปรียบกับชุดควบคุม ที่ความเข้มข้น 2.0% ของสารสกัดจากว่านน้ำมีประสิทธิภาพในการเป็นสารฆ่าหนอนใยผักวัย 4 สูงสุด มีเปอร์เซ็นต์การตายสูงสุดเท่ากับ 76.0 และ 96.0% ค่า LC50 มีค่าเท่ากับ 0.75 และ 0.25% ที่ 24 และ 48 ชั่วโมง ตามลำดับ ในการยับยั้งการวางไข่ ที่ความเข้มข้นที่ 2.0% มีผลต่อการยับยั้งการวางไข่ของผีเสื้อหนอนใยผักสูงสุด มีจำนวนไข่เฉลี่ย 2.00 + 0.81 ฟอง คิดเป็น 95.31% โดยความเข้มข้นที่ 0.125, 0.25, 0.5 และ 0.1% มีเปอร์เซ็นต์การยับยั้งการวางไข่เท่ากับ 45.31, 59.37, 71.87 และ 80.47% ที่เวลา 48 ชั่วโมง ตามลำดับ ในขณะที่ชุดควบคุมเปรียบเทียบไม่มีเปอร์เซ็นต์การยับยั้งการวางไข่ นอกจากนี้ที่ความเข้มข้น 0.125% ของสารสกัดจากว่านน้ำ ระยะดักแด้มีเปอร์เซ็นต์การตาย 32.0% เมื่อเปรียบเทียบกับชุดควบคุม ระยะดักแด้มีเปอร์เซ็นต์4.60% ระยะเวลาในการพัฒนาเจริญเติบโตเป็นระยะดักแด้และตัวเต็มวัยใช้เวลาเฉลี่ย 7.80 + 0.74 และ 10.60 + 0.47 วัน ตามลำดับ ในขณะที่ชุดควบคุมระยะเวลาในการพัฒนาเจริญเติบโตเป็นระยะดักแด้และตัวเต็มวัยใช้เวลาเฉลี่ย 4.60 + 0.80 และ 6.20 + 0.74 ตัว ตามลำดับ
Article Details

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
##default.contextSettings.thaijo.licenseTerms##เอกสารอ้างอิง
นันทยา กัลยาศิริ. (2549). ควบคุมศัตรูพืชด้วยสารสกัดจากพืช. จดหมายขาวผลิใบ, 9(8), 1-3.
ษศิวรรณ เรื่อศรีจันทร์. (2557, พฤศจิกายน). หนอนใยผัก. จดหมายข่าวพยากรณ์และเตือนภัยการระบาดศัตรูพืช สำนักงานเกษตรจังหวัดตราด, 3(3), 1-3.
Abbott, W.S. (1925). A method for computing the effectiveness of an insecticide. Journal Econ Entomol, 18, 265-267.
Azad, M.A.K. (2012). Effect of botanical extract on pest control in Brinjal field. Journal environ sci and nat resources, 5(2), 173–176.
Balakumbahan, K. Rajamani, K. & Kumanan, K. (2010). Acorus calamus : An overview. Journal Med Pants Res, 4(25), 2740-2745.
Conte de Oliveira, A., et al. (2011). Resistance of Brazilian diamondback moth populations to insecticides. Sci. Agric, 68(2), 154-159.
Dey, K.R., Choudhury, P. & Dutta, B.K. (2013). Impact of pesticide use on the health of farmers : A study in Barak Valley, Assam (India). Journal Environ Chem Ecotoxicol, 5, 269-277.
Finney, D.J. (1971). Probit Analysis. (3 rd ed.). London : Cambridge University Press.
Khater, H.F. (2012). Prospects botanical biopecticides in insect pest management. Phramacologia, 3(12), 641-651.
Melani, D., Himawan, T. & Afandhi, A. (2016). Bioactivity of sweet flag (Acorus calamus Linnaeus) essential oils against Spodoptera litura Fabricius (Lepidoptera : Noctuidae). Journal Trop Life. Science, 6(2), 86-90.
Mishra, M., Gupta, K.K. & Kumar, S. (2015). Impact of the stem extract of Thevetia neriifolia on the feeding potential and histological architecture of the midgut epithelial tissue of early fourth instars of Helicoverpa armigera Hübner. Int. Journal Trop. Insect Sci, 7, 53-60.
Rizwan-ul-haq, M., et al. (2010). Impact of two medicinal plant extracts on glutathione s-transferase activity in the body tissues Spodoptera exigua (Lepidoptera : Noctuidae). akistan Journal of Botany, 42(6), 3971-3979.
Sarwar, M. (2015). The killer chemicals for control of agriculture insect pests : The botanical insecticides. Int. Journal Chem and Biomol Sci, 1(3), 123-128.
Senrung, A., et al. (2014). Effect of Murraya koenigii extracts on feeding and ovipositional response of Spodoptera litura (Fab.) (Lepidoptera : Noctuidae). Journal Ento. and Zoo Studies, 2(3), 27-31.
Sunitha, V., Singh, T.V.K. & Satyanarayana, J. (2014). Cross-resistance variation among different populations of diamondback moth, Plutella xylostella (Linn.) to new insecticides. Int. Journal Bio-resource and Stress Management, 5(4), 522-529.
Xue, R.D., Barnard, D.R. & Ali, A. (2001). Laboratory and field evaluation of insect repellents as oviposition deterrents against the mosquito Aedes albopictus. Med and Vet Entomol, 15, 126-133.