การประเมินระดับการเกิดโรคลำต้นเน่าในระยะต้นกล้าของปาล์มน้ำมัน

สุวิมล กลศึก; วรกร  สิทธิพงษ์; เทิดศักดิ์ สวัสดิ์สุข

doi:10.55164/jtai.v4i1.1167

ผู้แต่ง

สุวิมล กลศึก Department of Agriculture
วรกร สิทธิพงษ์
เทิดศักดิ์ สวัสดิ์สุข

DOI:

https://doi.org/10.55164/jtai.v4i1.1167

คำสำคัญ:

โรคลำต้นเน่า, ต้นกล้าปาล์มน้ำมัน, การเกิดโรค, ดัชนีความรุนแรงของโรค

บทคัดย่อ

โรคลำต้นเน่าเป็นโรคที่สร้างความเสียหายให้กับปาล์มน้ำมันเป็นอย่างมาก มีสาเหตุมาจากรา Ganoderma sp. การศึกษาระดับการเกิดโรคลำต้นเน่าในต้นกล้าปาล์มน้ำมัน มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินระดับการเกิดโรคลำต้นเน่าในระยะต้นกล้าของปาล์มน้ำมันเทเนอราผสมตัวเอง 5 สายพันธุ์ ได้แก่ 2/496T 8/1027T 9/908T 4/1075T และ 6/207T และปาล์มน้ำมันคู่ผสม 5 คู่ผสม ซึ่งได้มาจากแม่พันธุ์ดูราผสมข้ามกับพ่อพันธุ์เทเนอราทั้ง 5 สายพันธุ์ดังกล่าว ได้แก่ คู่ผสม 19 27 34 41 และ 47 ผลการทดลองพบว่า ต้นกล้าที่เป็นโรคแสดงอาการใบเหลืองซีด จากนั้นใบเปลี่ยนเป็นสีส้ม สีน้ำตาล สีน้ำตาลเข้ม และต้นกล้าตายในที่สุด โดยแสดงอาการจากใบล่างไปหาใบยอด จากการประเมินการเกิดโรคและดัชนีความรุนแรงของโรคหลังจากปลูกเชื้อสาเหตุโรคเป็นเวลา 12 เดือน พบว่าต้นกล้าปาล์มน้ำมันคู่ผสม 34 (242/224D X 9/908T) มีเปอร์เซ็นต์การเกิดโรคและดัชนีความรุนแรงของโรคน้อยที่สุด คือ 51.07 และ 38.50 เปอร์เซ็นต์ ตามลำดับ และมีเปอร์เซ็นต์ต้นกล้าตาย 23.93 เปอร์เซ็นต์ ส่วนพ่อพันธุ์เทเนอราผสมตัวเองทั้ง 5 สายพันธุ์ อ่อนแอต่อโรคลำต้นเน่า ผลการศึกษานี้สามารถใช้เป็นข้อมูลในการคัดเลือกเชื้อพันธุกรรมสำหรับปรับปรุงพันธุ์ปาล์มน้ำมันต้านทานโรคลำต้นเน่าต่อไป

เอกสารอ้างอิง

Alexander, A., Sipaut, C.S., Dayou, J., and Chong, KP. (2017). Oil palm roots colonization by Ganoderma boninense: An insight study using scanning electron microscopy. J Oil Palm Res. 29, 262–266.

Castillo, S.Y., Rodriguez, M.C., Gonzalez, L.F., Zuniga, L.F., Mestizo, Y.A., Medina, H.C., Montoya, C., Morales, A., Romero, H.M., and Sarria, G.A. (2022). Ganoderma zonatum is the causal agent of basal stem rot in oil palm in Columbia. J. Fungi. 8, 230-243.

Durand-Gasselin, T., Asmady, H., Flori, A., Jacquemard, J.C., Hayun Zaelanie, H., Breton, F., de Franqueville, H. (2005). Possible sources of genetic resistance in oil palm (Elaeis guineensis Jacq.) to basal stem rot caused by Ganoderma boninense-prospects for future breeding. Mycopathalogia. 159, 90-100.

Hilmi, N.H.Z., Idris, A.S., Maizatul-Suriza, M., Madihah, A.Z., and Nur-Rashyeda, R. (2022). Molecular PCR assays for detection of Ganoderma pathogenic to oil palm in Malaysia. Malays. Appl. Biol. 51, 171-182.

Idris, A.S, Kushairi, A., Ismail, A., and Ariffin, D. (2004). Selection for partial resistance in oil palm progenies to Ganoderma basal stem rot. Journal of Oil Palm Research. 16, 12-18.

Mandal, P.K., Kochu Babu, M., Jayanthi, M., and Satyavani, V. (2014). PCR based early detection of Ganoderma sp. Causing basal stem rot of oil palm in India. Journal of Plantation Crops. 42, 392-394.

Nur Ain Izzati, M.Z., and Abdullah, F. (2008). Disease suppression in Ganoderma-infected oil palm seedlings treated with Trichoderma harzianum. Plant Protect Sci. 44, 101-107.

Nurfaezah, S., Dzolkhifli, O., Nasehi, A., and Wong, M.Y. (2019). Pyraclostrobin suppressed Ganoderna (BAR), promoted plant growth and induce early expression of beta-1, 3-glucanase in oil palm (Elaeis guineensis). J. Oil Palm Res. 31, 248-261.

Nur-Sabrina A.A., Sariah, M., and Zaharah, A.R. (2012). Suppression of basal stem rot disease progress in oil palm (Elaeis guineensis) after copper and calcium supplementation. Pertanika J. Trop. Agric. Sci. 35, 13–24.

Paterson, R.R.M. (2019). Ganoderma bininense disease deduced from simulation modelling with large data sets of future Malaysian oil palm climate. Phytoparasitica. 47, 255-262.

Pornsuriya, C., Sanprapao, A., Srihanant, N., Worapattamasri, K., Kittimorakul, J., Phithakkit, S., and Petcharat, V. (2013). A survey of disease and disorder in oil palm of southern Thailand. Plant Orthology Journal. 12, 169-175.

Rakib, M.R.M., Bong, C.F.J., Khairulmazmi, A., and Idris, A.S. (2015). Agressiveness of Ganoderma boninense and G. zonatum isolated from upper-and basal stem rot of oil palm (Elaeis guineensis) in Malaysia. Journal of oil palm research. 27, 229-240.

Rao, V., Lim, C.C., Chia, C.C., and Teo, K.W. (2003). Studies on Ganoderma spread and control. The Planter. 79, 367-383.

Rebitanim, N.A., Hanafi, M.M., Idris, A.S., Abdullah, S.N.A., Mohidin, H., and Rebitanim, N.Z. (2020). GanoCare improves oil palm growth and resistance against Ganoderma basal stem rot disease in nursery and field trails. BioMed Research International. 929, 1-16.

Rees, R.W., Flood, J., Hasan, Y., Potter, U., and Cooper, R.M. (2009). Basal stem rot of oil palm (Elaeis guineensis); mode of root infection and lower stem invastion by Ganoderma boninense. Plant Pathology. 58, 982-989.

Sabrina, N., Sariah, M., and Zahrah, A.R. (2012). Suppression of basal stem rot disease progress in oil palm (Elaeis guineensis) after copper and calcium supplementation. Pertanika J. Trop. Agric. Sci. 35, 13-24.

Syahanim, S., Abrizah, O., Mohamad Arif, A.M., Idris, A.S., and Mohd Din, A. (2013). Identification of differentially expressed proteins in oil palm seedlings artificially infected with ganoderma: A proteomics approach. J. Oil Palm Res. 25, 298–304.

Utoma, C., and Niepold, F. (2000). Development of diagnostic methods for detecting Ganoderma-infected oil palms. J. Phytopathology. 148, 507-514.

Viva Rini, M., Nur Hasan, S., Hidayat, K.F., and Nur Aeny, T. 2022. Applications of Abuscular mycorrhiza fungi to improve growth of oil palm seedling and disease resistance against Ganoderma sp. JAAST. 6, 31-40.

Yuli, E., Dayou, J., and Chong, K.P. (2022). Morphological changes of G. boninense mycelia after challenged with thiram, ZnO NPs and lucsin. Malaysian Journal of Microscopy. 18, 36-45.