ผลของ BA และ NAA ต่อการเจริญและพัฒนาเนื้อเยื่อมันเทศพันธุ์เหลืองสายน้ำผึ้งอินโดในสภาพปลอดเชื้อ
DOI:
https://doi.org/10.55164/jtai.v1i1.159คำสำคัญ:
มันเทศ ลูกบอลปักชำ ในสภาพปลอดเชื้อบทคัดย่อ
การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของระดับความเข้มข้น BA (6-benzyladenine) และ NAA (1-Naphthalene acetic acid) ต่อการเจริญและพัฒนา การชักนำให้เกิดรากของชิ้นส่วนเนื้อเยื่อมันเทศพันธุ์เหลืองสายน้ำผึ้งอินโดในสภาพปลอดเชื้อ มี 2 การทดลอง ดังนี้ การทดลองที่ 1 ศึกษาระดับความเข้มข้นของ BA (0.5, 1 และ 2 มก./ล.) ร่วมกับ NAA (0.1, 0.3 และ 0.5 มก./ล) วางแผนการทดลองแบบปัจจัยร่วมในสุ่มสมบูรณ์ (Factorial in Completely Randomize Design; CRD) สำหรับการทดลองที่ 2 ศึกษาความเข้มข้นของ NAA (0.1, 0.3 และ 0.5 มก./ล.) ที่เติมในลูกบอลปักชำ (cutting-ball) เปรียบเทียบกับไม่เติมสารในลูกบอลปักชำ และเพาะเลี้ยงบนอาหารกึ่งแข็งสูตร MS วางแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ หลังจากทำการเพาะเลี้ยงเป็นเวลา 4 สัปดาห์ การทดลองที่ 1 พบว่า เกิดการปนเปื้อนเชื้อจุลินทรีย์ในทุกกรรมวิธีที่ไม่มีความแตกต่างกัน (ร้อยละ 10) ส่วนอาหารกึ่งแข็งสูตร MS ที่เติม BA ความเข้มข้น 0.50 และ 1.00 มก./ล. ร่วมกับ NAA ความเข้มข้น 0.10 มก./ล. มีผลต่อการเจริญและพัฒนาเป็นก้อนแคลลัสได้ดี (น้ำหนักสดและแห้งของแคลลัส) แต่ที่เลี้ยงบนอาหารสูตร MS ที่ไม่เติม BA และ NAA (ชุดควบคุม) มีความสูงของยอดและความยาวรากที่มากที่สุด (1.49±0.21 และ 7.47±1.75 ซม. ตามลำดับ) ชิ้นส่วนปลายยอดสามารถชักนำให้เกิดรากได้ในลูกบอลปักชำที่ไม่เติม และที่เติม NAA ไม่มีความแตกต่างกับที่เลี้ยงในสภาพบนอาหารกึ่งแข็งสูตร MS ยกเว้นความยาวราก (ซม.) มากที่สุดเมื่อชิ้นส่วนปลายยอดเลี้ยงบนอาหารกึ่งแข็งสูตร MS คือ 8.47±1.46 ซม.
References
กรมศุลกากร. 2559. สถิติการนำเข้าส่งออก. แหล่งที่มา http://internet1.customs.go.th/ext/Statistic/StatisticIndex2550.jsp, (4 ตุลาคม 2565).
จิรพันธ์ ศรีทองกุล, 2552. เมล็ดเทียม, Technology-Bio. 36(207) 56-60
ณิชารีย์ เผ่าพงศ์วนา และ อภิชาติ ชิดบุรี. (2561). ผลของระยะเวลาและอุณหภูมิการเก็บรักษาลูกบอลปักชำต่อการ เจริญของชิ้นส่วนปลายยอดกุหลาบหนูที่ได้จากการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. มหาวิทยาลัยเชียงใหม่ คณะเกษตรศาสตร์. ศูนย์นวัตกรรมเทคโนโลยีหลังการเก็บเกี่ยว.
ธราธร ทีรฆฐิติ, อรนุช ลีลาพร, ยินดี ชาญวิวัฒนา, และลิขิต มณีสินธุ์. (2559). คู่มือส่งเสริมการเรียนรู้ด้านพืช “การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อไม้ดอกไม้ประดับ”. สำนักงานพัฒนาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งชาติ.
พัชาราวดี วัฒนวิกย์กิจ วราพร วีระพลากร พนิดา วงษ์แหวน และยุพา มงคลสุข. 2544. การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อมันเทศ. P 383-390. ใน รายงานการประชุมทางวิชาการของมหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ ครั้ง 39 วันที่ 5-7 กุมภาพันธ์ 2544 มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ กรุงเทพฯ.
อภิชาติ ชิดบุรี, พิทักษ์ พุทวรชัย และ ศิริพรรณ สุรินทร์ (2559) ผลของความเข้มข้นของ IAA ในน้ำหมักจากแบคทีเรียต่อการเจริญและพัฒนาของการเพาะเลี้ยงแคลลัสเชียงดา, วารสารพืชศาสตร์สงขลานครินทร์ ปีที่3 ฉบับพิเศษ (3), 21-25.
Abubakar, A.S.,S.U. Yahaya, A.S. Shaibu, H. Ibrahim, A.K. Ibrahim, Z.M. Lawan and A.M. Isa. 2018. In virto propagation of sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) cultivars. Agric. Sci. Digest., 38(1): 17-21.
Dolinski, R. and A. Olek. 2013. Micropropagation of sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) from node explants. Acta, Sci. Pol., Hortorum Cultus. 12(4): 117-127.
Huang, N. 1997. Growth medium and environmental studies of sweet potato meristem culture. Thesis, Massey University, New Zealand. 75 pp.
Ogero, K.O., N.M. Gitonga, M. Mwangi, O. Omborf and M. ngugi. 2011. A low-cost medium for sweet potato micropropagation. African Crop Science Conference Proceeding, Vol. 10. 57-63.
Skoog, F. and C. O. Miller. 1957. Chemical regul ator of growth and organ formation in plant tissue culture in vitro. Sym. Soc. Exp. Biol. Med. 11 : 118-131.
Vettorazzi, R.G., V.S. Carvalho, C.P. Sudre and R. Rodrigues. 2017. Developing an in vitro optimized protocol to sweet potato landraces conservation. Acta Scientiarum Agronomy. 39(3): 359-367.
Wetter, L.R. and F. Constabel. 1982. Plant Tissue Culture Methods. National research Council of Canada. Canada. 145 p.
เผยแพร่แล้ว
How to Cite
ฉบับ
บท
License
Copyright (c) 2023 มหาวิทยาลัยทักษิณ
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
