In vitro Multiplication Technique of Petrocosmea pubescens, an Endemic Species in Thailand
Keywords:
Gesneriaceae, Micropropagation, Limestone plantAbstract
Petrocosmea pubescens found only at Doi Tung, Chiang Rai province is an endemic species of Thailand. According to the International Union for Conservation of Nature (IUCN), it has been classified as vulnerable species. This research aimed to determine sterilization method and plant material which were suitable for micropropagation and conservation of this species. The result showed that the most effective sterilization method was dipping the mature pod of P. pubescens in 95% ethanol followed by quick moving the pod over flame before culturing seeds on medium. This sterilization method resulted in 50% sterilized seeds that successfully developed into plantlets. Various types and concentrations of plant growth regulators were also examined. The results indicated that after 3 months of culture, the highest shoot number (16 shoots per explant) was obtained from MS medium supplemented with 0.5 mg/L IBA.
References
ธีรภัทร ศรีรัตนโชติ อนุพันธ์ กงบังเกิด และปราณี นางงาม. 2541. วิธีการฟอกฆ่าเชื้อที่เหมาะสมต่อการเพาะเลี้ยงพืชวงศ์ชาฤๅษีของประเทศไทยในสภาพปลอดเชื้อ. ปริญญาโท, ภาควิชาชีววิทยา คณะวิทยาศาสตร์ มหาวิทยาลัยนเรศวร.
พัชร ปิริยะวินิตร พัฒน์นรี รักษ์คิด ปราโมทย์ ไตรบุญ และปาริฉัตร สังข์สะอาด. 2555. ศึกษาเทคนิคการขยายพันธุ์นครินทรา (Trisepalum sangwaniae) พืชเฉพาะถิ่นของประเทศไทยในสภาพปลอดเชื้อ. หน้า 395-400. ใน: การประชุมวิชาการ มหาวิทยาลัยขอนแก่นวิทยาเขตหนองคาย ครั้งที่ 2, 30-31 สิงหาคม 2555. มหาวิทยาลัยขอนแก่นวิทยาเขตหนองคาย, หนองคาย.
พัชร ปิริยะวินิตร พัฒน์นรี รักษ์คิด และปัณฑารีย์ กาญจนวัฒนาวงศ์. 2561. เทคนิคการขยายพันธุ์ชาฤๅษีดอยตุง (Paraboea doitungensis) ในสภาพปลอดเชื้อเพื่อการอนุรักษ์. วารสารวิชาการเกษตร 36(3): 268-278.
Bilkey, P.C., B.H. McCown and A.C. Hildebrandt. 1978. Micropropagation of african violet from petiole cross-sections. HortScience 13(1): 37-38.
Daud, N. and R.M. Taha. 2008. Plant regeneration and floral bud formation from intact floral parts of African violet (Saintpaulia ionantha H. Wendl.) cultured in vitro. Pakistan Journal of Biological Sciences 11: 1055-1058.
Ghasemi, Y., G.A. Nematzadeh, V.G. Omran, A. Dehestani and S. Hosseini. 2012. The effects of explants type and phytohormones on African violet (Saintpaulia ionantha) micropropagation efficiency. Biharean Biologist 6(2): 73-76.
Ji, H. 2008. China Papers. Studies on Cytology, Reproductive Biology and Pollen Morphology of Petrocosmea (Gesneriaceae) from China. (online): Available source : http://ir.kib.ac.cn:8080/handle/151853/36 (August 29, 2020).
Kozak, D., J. Hetman and M. Witek. 2007. The influence of the mineral composition of the medium on in vitro propagation of Kohleria amabilis (Planch. Et Linden) Fritsch shoots. Acta Agrobotanica 60(1): 95-99.
Ma, G.H., A.T. Jaime, J.F. Lü, X.H. Zhang and J.T. Zhao. 2010. Shoot organogenesis and plant regeneration in Metabriggsia ovalifolia. Plant Cell Tissue and Organ Culture 105(3): 355-361.
Ma, G.H., C.X. He, H. Ren, Q.M. Zhang, S.J. Li, X.H. Zhang and B. Eric. 2011. Direct somatic embryogenesis and shoot organogenesis from leaf explants of Primulima tabacum. Biologia Plantarum 54(2): 361-365.
Mithila, J., J. Hall, J.M.R. Victor and P.K. Saxena. 2003. Thidiazuron induces shoot organogenesis at low concentrations and somatic embryogenesis at high concentrations on leaf and petiole explants of African violet (Saintpaulia ionantha Wendl.). Plant Cell Reports 21(5): 408-414.
Middleton, D.J. and P. Triboun. 2010. Two new species of Petrocosmea (Gesneriaceae) from Thailand. Thai Forest Bulletin (Botany) 38: 42-47.
Murch, S.J., J.M.R. Victor and P.K. Saxena. 2003. Auxin, calcium and sodium in somatic embryogenesis of African violet (Saintpaulia ionantha Wendl.) cv. Benjamin. Acta Horticulturae 625: 201-209.
North, J.J. and P.A. Ndakidemi. 2012. Evaluation of different ratios of auxin and cytokinin for the in vitro propagation of Streptocarpus rexii Lindl. International Journal of Physical Sciences 7(7): 1083-1087.
Shaw, J. 2011. A new species of Petrocosmea. The Plantsman 10(3): 177-179.
Siddique, N.A., M.A. Bari, N. Kharn, M. Rahman, M.H. Rahman and S. Huda. 2003. Plant regeneration from nodal segments derived callus in Hemidesmus indicus (L.) R.Br. (Anantamul) an endangered medicinal plant in Bangladesh. Journal of Biological Sciences 3: 1158-1163.
Sunpui, W. and K. Kanchanapoom. 2002. Plant regeneration from petiole and leaf of african violet. (Saintpaulia ionantha Wendl.) cultured in vitro. Songklanakarin Journal of Science and Technology 24(3): 357-364.
Tang Z. and H. Lin. 2007. Rapid in vitro multiplication of Chirita longgangensis W.T. Wang: An endangered Gesneriaceae species in China. Horticultural Science 42(3): 638-641.
Triboun, P. and D.J. Middleton. 2012. Petrocosmea pubescens. The IUCN Red List of Threatened Species 2012. (online): Available source: http://www.iucnredlist.org/details/201813/0 (March 15, 2023).
Yang, H., Y. Yang, Q. Wang, J. He, L. Liang, H. Qiu, Y. Wang and L. Zou. 2023. Adventitious shoot regeneration from leaf explants in Sinningia Hybrida ‘Isa’s Murmur’. Plants.11(1232): 1-11. (online): Available Source: https:// doi.org/10.3390/plants11091232 (September 6, 2023).
